Анализируя последовательности ДНК двух близких видов, вы обнаружили участки сильного позитивного отбора в генах, связанных с иммунным ответом — какие эволюционные сценарии могли привести к такой картине и какие эксперименты подтвердили бы вашу гипотезу
Коротко — какие сценарии могли дать сильный позитивный отбор в иммунных генах и какие конкретно тесты/эксперименты подтвердят каждую гипотезу. Возможные эволюционные сценарии - Хозяин‑патоген «гонка вооружений» (Red Queen): повторные адаптивные замены в сайтах узнавания/связывания. Предсказание: у отдельных аминокислот ω=dN/dS>1\omega=dN/dS>1ω=dN/dS>1 и сосредоточены в функциональных интерфейсах белка. - Недавний селективный фиксирующий скачок (selective sweep) после появления нового патогена: быстрая фиксация полезной аллели, локальное падение нейтральной полиморфии и длинные гаплотипы. - Региональная адаптация к разным патогеномам у двух видов (дивергентный отбор): фиксированные различия между видами, корреляция частот аллелей с экологией/патогенами. - Ввод адаптивных аллелей через интрогрессию от третьего вида: длинные гаплотипы, близкие к донору, D‑статистика положительна. - Дупликация и неофункционализация иммунных генов: новые копии с ускоренной эволюцией. - Балансирующий отбор/частотозависимый отбор: поддержание полиморфизма (иногда сопровождается сигнатурами положительного отбора в отдельных сайтах). - Артефакты: генетический дрейф, демографические эффекты, рекомбинация, GC‑смещённая конверсия (gBGC) или ошибки выравнивания — могут имитировать положительный отбор. Геномные и популяционно‑генетические тесты (первый шаг — исключить артефакты) - Оценить ω\omegaω глобально и по сайтам (branch‑site модели в PAML/HyPhy): проверить, есть ли подгруппа кодонов с ω>1\omega>1ω>1. - McDonald–Kreitman тест; оценить долю адаптивных замен α=1−Pn/PsDn/Ds\displaystyle \alpha = 1 - \frac{P_n/P_s}{D_n/D_s}α=1−Dn/DsPn/Ps
(где Pn,PsP_n,P_sPn,Ps — полиморфизм, Dn,DsD_n,D_sDn,Ds — дивергенция). - Сигнатуры селективного свипа: снижение нуклеотидной диверсификации вокруг локуса, отрицательные/положительные значения Tajima’s D, длинные гаплотипы (iHS, XP‑EHH). - Проверка интрогрессии: D‑статистика (ABBA‑BABA), построение гаплотипных деревьев, сравнение с донорными популяциями. - Различение gBGC и отбора: проверить смещение в направлениях замен (повышение GC на всех позициях, включая синонимичные) — если одинаково затронуты синонимичные и нонсин. замены, вероятен gBGC. - Проверка на балансирующий отбор: повышенная локальная полиморфия, наличие транс‑видовой полиморфии, SFS с избытком среднечастотных аллелей. - Коалесцентные/симуляционные модели, чтобы исключить демографию как причину. Функциональные эксперименты (жёсткая валидация адаптивности) - Аллель‑специфические in vitro/в vivo тесты: - CRISPR‑knock‑in/knock‑out (или замена аллелей) в клеточных линиях или модели; измерить устойчивость к инфекции (рост патогена), выработку цитокинов, выживаемость. - Сравнительные инфекции (reciprocal infection) живых организмов/модельных видов с разными аллелями. - Биохимические/молекулярные тесты: - Измерение аффинности связывания белок–антиген/рецептор (SPR, ELISA), влияние замен в положительно отобранных сайтах. - Мутогенез направленных аминокислот (site‑directed mutagenesis) у позиций, обнаруженных как «позитивно отобранные», и тестирование функции. - Структурное моделирование: сопоставление замен с функциональными доменами/поверхностью связи. - Эпидемиологические/полевые анализы: - Корреляция частот аллелей с распространённостью/видовым составом патогенов по географии (genotype–environment association). - GWAS/ассоциации с восприимчивостью к инфекции в популяциях. - Экспериментальная эволюция: культивировать хозяина с конкретным патогеном, смотреть, повторяются ли те же мутации/пути адаптации. - Контрольные тесты для исключения gBGC/сильной рекомбинации: проверить профили замены и локальную рекомбинацию. Практическая последовательность (рекомендуемая) 1) Проверить, не артефакт ли это: выравнивание, паралоги, gBGC, демография. 2) Применить комплементарные попген‑тесты (ω\omegaω, MK, iHS/XP‑EHH, D‑статистика). 3) Локализовать позитивные сайты и смоделировать структуру/функцию. 4) Провести целевые функциональные эксперименты (CRISPR, связывание, инфицирование) и корреляционные полевые анализы. Если нужно, могу предложить конкретные команды/пакеты для анализа (PAML, HyPhy, SweepFinder, selscan, ANGSD), наборы данных и дизайн CRISPR‑экспериментов для вашей системы.
Возможные эволюционные сценарии
- Хозяин‑патоген «гонка вооружений» (Red Queen): повторные адаптивные замены в сайтах узнавания/связывания. Предсказание: у отдельных аминокислот ω=dN/dS>1\omega=dN/dS>1ω=dN/dS>1 и сосредоточены в функциональных интерфейсах белка.
- Недавний селективный фиксирующий скачок (selective sweep) после появления нового патогена: быстрая фиксация полезной аллели, локальное падение нейтральной полиморфии и длинные гаплотипы.
- Региональная адаптация к разным патогеномам у двух видов (дивергентный отбор): фиксированные различия между видами, корреляция частот аллелей с экологией/патогенами.
- Ввод адаптивных аллелей через интрогрессию от третьего вида: длинные гаплотипы, близкие к донору, D‑статистика положительна.
- Дупликация и неофункционализация иммунных генов: новые копии с ускоренной эволюцией.
- Балансирующий отбор/частотозависимый отбор: поддержание полиморфизма (иногда сопровождается сигнатурами положительного отбора в отдельных сайтах).
- Артефакты: генетический дрейф, демографические эффекты, рекомбинация, GC‑смещённая конверсия (gBGC) или ошибки выравнивания — могут имитировать положительный отбор.
Геномные и популяционно‑генетические тесты (первый шаг — исключить артефакты)
- Оценить ω\omegaω глобально и по сайтам (branch‑site модели в PAML/HyPhy): проверить, есть ли подгруппа кодонов с ω>1\omega>1ω>1.
- McDonald–Kreitman тест; оценить долю адаптивных замен
α=1−Pn/PsDn/Ds\displaystyle \alpha = 1 - \frac{P_n/P_s}{D_n/D_s}α=1−Dn /Ds Pn /Ps (где Pn,PsP_n,P_sPn ,Ps — полиморфизм, Dn,DsD_n,D_sDn ,Ds — дивергенция).
- Сигнатуры селективного свипа: снижение нуклеотидной диверсификации вокруг локуса, отрицательные/положительные значения Tajima’s D, длинные гаплотипы (iHS, XP‑EHH).
- Проверка интрогрессии: D‑статистика (ABBA‑BABA), построение гаплотипных деревьев, сравнение с донорными популяциями.
- Различение gBGC и отбора: проверить смещение в направлениях замен (повышение GC на всех позициях, включая синонимичные) — если одинаково затронуты синонимичные и нонсин. замены, вероятен gBGC.
- Проверка на балансирующий отбор: повышенная локальная полиморфия, наличие транс‑видовой полиморфии, SFS с избытком среднечастотных аллелей.
- Коалесцентные/симуляционные модели, чтобы исключить демографию как причину.
Функциональные эксперименты (жёсткая валидация адаптивности)
- Аллель‑специфические in vitro/в vivo тесты:
- CRISPR‑knock‑in/knock‑out (или замена аллелей) в клеточных линиях или модели; измерить устойчивость к инфекции (рост патогена), выработку цитокинов, выживаемость.
- Сравнительные инфекции (reciprocal infection) живых организмов/модельных видов с разными аллелями.
- Биохимические/молекулярные тесты:
- Измерение аффинности связывания белок–антиген/рецептор (SPR, ELISA), влияние замен в положительно отобранных сайтах.
- Мутогенез направленных аминокислот (site‑directed mutagenesis) у позиций, обнаруженных как «позитивно отобранные», и тестирование функции.
- Структурное моделирование: сопоставление замен с функциональными доменами/поверхностью связи.
- Эпидемиологические/полевые анализы:
- Корреляция частот аллелей с распространённостью/видовым составом патогенов по географии (genotype–environment association).
- GWAS/ассоциации с восприимчивостью к инфекции в популяциях.
- Экспериментальная эволюция: культивировать хозяина с конкретным патогеном, смотреть, повторяются ли те же мутации/пути адаптации.
- Контрольные тесты для исключения gBGC/сильной рекомбинации: проверить профили замены и локальную рекомбинацию.
Практическая последовательность (рекомендуемая)
1) Проверить, не артефакт ли это: выравнивание, паралоги, gBGC, демография.
2) Применить комплементарные попген‑тесты (ω\omegaω, MK, iHS/XP‑EHH, D‑статистика).
3) Локализовать позитивные сайты и смоделировать структуру/функцию.
4) Провести целевые функциональные эксперименты (CRISPR, связывание, инфицирование) и корреляционные полевые анализы.
Если нужно, могу предложить конкретные команды/пакеты для анализа (PAML, HyPhy, SweepFinder, selscan, ANGSD), наборы данных и дизайн CRISPR‑экспериментов для вашей системы.