Как альтернативный сплайсинг и посттрансляционные модификации увеличивают функциональное разнообразие белков из одного гена; приведите примеры и методы для их исследования
Кратко — механизмы, примеры, методы. 1) Как это увеличивает функциональное разнообразие - Альтернативный сплайсинг (АС) создаёт разные мРНК/белковые изоформы из одного гена за счёт включения/исключения экзонов, альтернативных 5'/3' сайтов, удержания интронов, взаимно исключающих экзонов, альтернативных промотеров/полиаденилирования; это меняет домены, мотивацию локализацию, комплексообразование, стабильность и регуляцию белков. Примерно 95%~95\%95% многёкзонных генов человека подвергаются АС. - Посттрансляционные модификации (ПТМ) — ковалентные изменения аминокислот (фосфорилирование, ацетилирование, убиквитинирование, гликозилирование, метилирование, липидирование, протеолиз и т.д.), которые изменяют активность, конформацию, срок жизни, локализацию и взаимодействия белка. Существуют ≳200\gtrsim 200≳200 типов ПТМ. - Взаимодействие: АС меняет набор остатков/мотивов, доступных для ПТМ (появляются/исчезают сайты модификации); ПТМ модифицируют сплайсинговые факторы и тем самым влияют на выбор сплайсинга. 2) Яркие примеры - Drosophila Dscam — генерация очень большого числа вариативных изоформ (≈38016 \approx 38016 ≈38016) для синаптической специфичности. - CD44 — множество изоформ через включение вариабельных экзонов влияет на адгезию и метастазирование. - BCL-X — альтернативный сплайсинг даёт Bcl-xL (антиапоптотический) и Bcl-xS (проапоптотический). - p53 — комбинированные ПТМ (фосфорилирование, ацетилирование, убиквитинирование) контролируют стабильность и транскрипционную активность. - Гистоны — ацетилирование/метилирование на хвостах (histone code) меняют экспрессию генов. - Инсулин — протеолиза и дисульфидные мосты необходимы для созревания/функции. - Tau — гиперфосфорилирование связано с агрегацией при болезни Альцгеймера. 3) Методы для изучения альтернативного сплайсинга - RNA-seq (короткие риды) + инструменты для анализа сплайсинга: rMATS, SUPPA2, MAJIQ; количественная оценка изоформ — Kallisto, Salmon, StringTie. - Длинные риды (PacBio Iso-Seq, Oxford Nanopore) для прямого определения полноразмерных транскриптов/изоформ. - RT-PCR / qPCR с изоформо-специфичными праймерами; минигенные конструкторы (splicing reporters). - CLIP-seq (HITS-CLIP, iCLIP, eCLIP) для картирования связывания РНК‑белков (сплайсфакторы). - single-cell RNA-seq для клеточно-специфичного сплайсинга; Ribosome profiling (Ribo-seq) для проверки трансляции изоформ. 4) Методы для изучения ПТМ - Масспектрометрия (LC‑MS/MS) — основной метод для идентификации и локализации сайтов ПТМ; топ‑даун протеомика для изучения комбинированных модификаций на одном молекуле. - Энризмент для специфичных ПТМ: фосфопептиды (IMAC, TiO2), убиквитиновый «ди‑Gly» пептид‑энриджмент и т.п. - Антитела к специфичным ПТМ (вестерн‑блот, IP, иммунопреципитация). - Мутагенез (фосфомиметики/нефосфорилируемые замены) для функциональных тестов; протеазный картинг для картирования сайтиов клива. - Гликопротеомика, протеометрические подходы для стехиометрии модификации. - Proximity‑labeling (BioID, APEX) и фосфор‑/убиквитин‑протеомика для контекстной информации. - Структурные методы (КРИО‑EM, рентген) для понимания эффекта ПТМ на конформацию. 5) Комбинированные подходы и ресурсы - Совместное использование длинных ридов + фосфо‑/убиквитин‑протеомики и топ‑даун MS выявляет, какие изоформы реально модифицированы и функционируют. - Базы и инструменты: UniProt, PhosphoSitePlus, dbPTM, Ensembl, GTEx; предикторы сайтов ПТМ: NetPhos, GPS. Заключение (коротко): АС и ПТМ действуют на разных уровнях — генетико‑транскрипционном и белковом — и в сочетании дают экспоненциально больше функциональных состояний из одного гена; их изучают интегрированными методами транскриптомики, протеомики, молекулярной биологии и структурной биофизики.
1) Как это увеличивает функциональное разнообразие
- Альтернативный сплайсинг (АС) создаёт разные мРНК/белковые изоформы из одного гена за счёт включения/исключения экзонов, альтернативных 5'/3' сайтов, удержания интронов, взаимно исключающих экзонов, альтернативных промотеров/полиаденилирования; это меняет домены, мотивацию локализацию, комплексообразование, стабильность и регуляцию белков. Примерно 95%~95\% 95% многёкзонных генов человека подвергаются АС.
- Посттрансляционные модификации (ПТМ) — ковалентные изменения аминокислот (фосфорилирование, ацетилирование, убиквитинирование, гликозилирование, метилирование, липидирование, протеолиз и т.д.), которые изменяют активность, конформацию, срок жизни, локализацию и взаимодействия белка. Существуют ≳200\gtrsim 200≳200 типов ПТМ.
- Взаимодействие: АС меняет набор остатков/мотивов, доступных для ПТМ (появляются/исчезают сайты модификации); ПТМ модифицируют сплайсинговые факторы и тем самым влияют на выбор сплайсинга.
2) Яркие примеры
- Drosophila Dscam — генерация очень большого числа вариативных изоформ (≈38016 \approx 38016 ≈38016) для синаптической специфичности.
- CD44 — множество изоформ через включение вариабельных экзонов влияет на адгезию и метастазирование.
- BCL-X — альтернативный сплайсинг даёт Bcl-xL (антиапоптотический) и Bcl-xS (проапоптотический).
- p53 — комбинированные ПТМ (фосфорилирование, ацетилирование, убиквитинирование) контролируют стабильность и транскрипционную активность.
- Гистоны — ацетилирование/метилирование на хвостах (histone code) меняют экспрессию генов.
- Инсулин — протеолиза и дисульфидные мосты необходимы для созревания/функции.
- Tau — гиперфосфорилирование связано с агрегацией при болезни Альцгеймера.
3) Методы для изучения альтернативного сплайсинга
- RNA-seq (короткие риды) + инструменты для анализа сплайсинга: rMATS, SUPPA2, MAJIQ; количественная оценка изоформ — Kallisto, Salmon, StringTie.
- Длинные риды (PacBio Iso-Seq, Oxford Nanopore) для прямого определения полноразмерных транскриптов/изоформ.
- RT-PCR / qPCR с изоформо-специфичными праймерами; минигенные конструкторы (splicing reporters).
- CLIP-seq (HITS-CLIP, iCLIP, eCLIP) для картирования связывания РНК‑белков (сплайсфакторы).
- single-cell RNA-seq для клеточно-специфичного сплайсинга; Ribosome profiling (Ribo-seq) для проверки трансляции изоформ.
4) Методы для изучения ПТМ
- Масспектрометрия (LC‑MS/MS) — основной метод для идентификации и локализации сайтов ПТМ; топ‑даун протеомика для изучения комбинированных модификаций на одном молекуле.
- Энризмент для специфичных ПТМ: фосфопептиды (IMAC, TiO2), убиквитиновый «ди‑Gly» пептид‑энриджмент и т.п.
- Антитела к специфичным ПТМ (вестерн‑блот, IP, иммунопреципитация).
- Мутагенез (фосфомиметики/нефосфорилируемые замены) для функциональных тестов; протеазный картинг для картирования сайтиов клива.
- Гликопротеомика, протеометрические подходы для стехиометрии модификации.
- Proximity‑labeling (BioID, APEX) и фосфор‑/убиквитин‑протеомика для контекстной информации.
- Структурные методы (КРИО‑EM, рентген) для понимания эффекта ПТМ на конформацию.
5) Комбинированные подходы и ресурсы
- Совместное использование длинных ридов + фосфо‑/убиквитин‑протеомики и топ‑даун MS выявляет, какие изоформы реально модифицированы и функционируют.
- Базы и инструменты: UniProt, PhosphoSitePlus, dbPTM, Ensembl, GTEx; предикторы сайтов ПТМ: NetPhos, GPS.
Заключение (коротко): АС и ПТМ действуют на разных уровнях — генетико‑транскрипционном и белковом — и в сочетании дают экспоненциально больше функциональных состояний из одного гена; их изучают интегрированными методами транскриптомики, протеомики, молекулярной биологии и структурной биофизики.